肉毒毒素的致病与应用虚拟仿真实验系统
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| 项目名称 | 省份 | ||
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业主类型 | |
| 总投资 | 建设年限 | ||
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| 审批机关 | 审批事项 | ||
| 审批代码 | 批准文号 | ||
| 审批时间 | 审批结果 | ||
| 建设内容 | |||
基本信息与申购明细
| 项目名称： | 肉毒毒素的致病与应用虚拟仿真实验系统 | 项目编号： | fjmu20230130 |
| 采购单位： | 福建医科大学 | 预算金额： | 登录即可免费查看.00 |
| 付款方式 | “货到安装、验收合格，资产建账入库30天内付清 | ||
| 物品名称： | 肉毒毒素的致病与应用虚拟仿真实验建设 | 数量： | 1 | 单位： | 套 | ||
| 预算单价： | 登录即可免费查看.00 | 是否标配： | 否 | ||||
| 申购时间： | 2023-10-17 | 保修期(月)： | 36 | ||||
| 送货地址： | 福建医科大学指定地点 | ||||||
| 设备清单列表： | |||||||
| 技术参数： | 一、投标人须知 1、请投标方认真阅读“网上竞价人须知”和“网上竞价使用手册”：http://www.fyzb.com/index/download.html 2、请投标方将响应文件及相关证明材料（含附件）盖印签字后扫描上传。将所有扫描的图片粘贴至同一份WORD或PDF文档中，请勿逐个图片上传。 3、报价说明：参照闽财购[2010]18号文件规定，供应商提交报价必须低于公告最高限价3％（不含）以上，否则，视为无效报价。在符合采购需求且报价有效的前提下，投标报价最低值中标（报价相同的，以报价时间优先者中标）。 4、福建医科大学教育科技发展有限公司相关问题请咨询0591-87382097。 二、技术参数： 1、系统概述 主要通过三维仿真技术对肉毒毒素的致病与应用实验的实验环境及实验过程进行仿真模拟。基于学校校级平台，建设肉毒毒素的致病与应用虚拟仿真实验项目，操作者在三维仿真模拟的实验场景中，可通过操作键盘、鼠标点击实验设备、实验环节进行操作，开展针对性的交互使用训练。同时，实验配以图文内容等相关介绍，进行实验教学培训、授课等实验教学工作，提高教学效率和学生的学习积极性。同时，使学生能够不受时间和地点限制，完成专业的培训和锻炼，建成一套技术先进与实用相结合的实验教学项目。 2、开发引擎 （1）采用B/S系统架构，满足校园网、互联网远程开放教学需要。 （2）为保证系统的交互性和扩展性，PC端运行的最大分辨率≤1920*1080。 3、操作要求 （1）要求根据具体实验内容，符合软件交互方式，支持鼠标操作。 （2）系统提供快速导航功能，指导使用者开展实验。 （3）采用动画的形式模拟实验全流程。 4、功能要求 （1）可随时切换屏幕缩放，返回上一步及实验首界面，要以文字、图片、语音的形式对实验内容加以介绍，方便学生快速理解实验内容完成实验； （2）系统帮助，要以文字、图片、语音等形式，对实验操作进行引导式的帮助，帮助学生快速学习软件操作； 5、实验模式 （1）学习模式：可以帮助学生进行实验的练习，提供实验过程的相关指导，学生能够根据提示进行操作，操作错误会有提示。 （2）考核模式：作为实验的考试，学生操作错误，会进行扣分，结束实验后可弹出对应的实验得分。 6、模型动画技术要求 （1）必须按照1：1制作场景及配套设施； （2）标准化建模，引擎场景要做到最大优化，保证系统流畅运行； （3）有近距离交互功能模型需要精细建模，单体模型不能有穿插； （4）场景内模型不能有闪面、重面、破面，不能有多边面，保证场景演示无闪烁现象； （5）布线基于结构优化表现，所有模型必须都要有光滑组，光滑组处理符合标准； （6）模型贴图需要最大限度的利用贴图空间，减少接缝； （7）系统需进行场景烘焙，烘焙不能曝光过度，不能有黑边现象，烘焙方式视场景优化情况而定； （8）系统场景动画要求符合仿真训练要求； （9）系统场景帧率≥30帧。 7、项目内容具体要求 分为食源性中毒模块、医源性中毒模块、肉毒素应用模块三个部分。 7.1食源性中毒模块 7.1.1. 虚拟病人食源性肉毒素中毒案例 7.1.2样品初步制备 7.1.2.1样品保存待用：待检样品应放置2℃～5℃冰箱冷藏； 7.1.2.2固态与半固态食品的保存待用：固体或游离液体很少的半固态食品，放入无菌均质袋或无菌乳钵，块状食品以无菌操作切碎，含水量较高的固态食品加入25mL明胶磷酸盐缓冲液，乳粉、牛肉干等含水量低的食品加入50mL明胶磷酸盐缓冲液，浸泡30min，用拍击式均质器拍打2min或用无菌研杵研磨制备样品匀液，收集备用； 7.1.2.3液体食品的保存待用：液态食品摇匀，以无菌操作量取25mL检验。 7.1.3细菌培养与镜检 包括细菌培养检出、分离纯化、形态观察、染色镜检等内容，实验中可播放相关操作视频。 7.1.3.1增菌培养与检出试验 ①取出庖肉培养基4支和TPGY肉汤管2支，隔水煮沸10min～15min，排除溶解氧，迅速冷却，切勿摇动，在TPGY肉汤管中缓慢加入胰酶液至液体石蜡液面下肉汤中，每支1mL，制备成TPGYT。 ②吸取样品匀液或毒素制备过程中的离心沉淀悬浮液2 mL，接种至庖肉培养基中，每份样品接种4支，2支直接放置35℃±1℃厌氧培养至5d，另2支放80℃保温10 min，再放置35℃±1℃厌氧培养至5d；同样方法接种2支TPGYT肉汤管，28℃±1℃厌氧培养至5d。 注：接种时，用无菌吸管轻轻吸取样品匀液或离心沉淀悬浮液，将吸管口小心插入肉汤管底部，缓缓放出样液至肉汤中，切勿搅动或吹气。 ③检查记录增菌培养物的浊度、产气、肉渣颗粒消化情况，并注意气味。肉毒梭菌培养物为产气、肉汤浑浊（庖肉培养基中A型和B型肉毒梭菌肉汤变黑）、消化或不消化肉粒、有异臭味。 ④取增菌培养物进行革兰氏染色镜检，观察菌体形态，注意是否有芽胞、芽胞的相对比例、芽胞在细胞内的位置。 ⑤若增菌培养物5d无菌生长，应延长培养至10d，观察生长情况。 ⑥取增菌培养物阳性管的上清液，可进行毒素检出和确证试验，必要时进行定型试验，阳性结果可证明样品中有肉毒梭菌存在。 7.1.3.2分离与纯化培养+菌落形态观察 ①增菌液前处理，吸取1mL增菌液至无菌螺旋帽试管中，加入等体积过滤除菌的无水乙醇，混匀，在室温下放置1h。 ②取增菌培养物和经乙醇处理的增菌液分别划线接种至卵黄琼脂平板，35℃±1℃厌氧培养48h。 ③观察平板培养物菌落形态，肉毒梭菌菌落隆起或扁平、光滑或粗糙，易成蔓延生长，边缘不规则，在菌落周围形成乳色沉淀晕圈（E型较宽，A型和B型较窄），在斜视光下观察，菌落表面呈现珍珠样虹彩，这种光泽区可随蔓延生长扩散到不规则边缘区外的晕圈。 ④菌株纯化培养，在分离培养平板上选择5个肉毒梭菌可疑菌落，分别接种卵黄琼脂平板，35℃±1℃，厌氧培养48h，按2.2.3观察菌落形态及其纯度。 7.1.3.3鉴定试验 挑取可疑菌落进行涂片、革兰氏染色和镜检。 7.1.4毒素基因分子生物学检测 7.1.4.1菌株活化：挑取可疑菌落或待鉴定菌株接种TPGY培养液，35℃±1℃厌氧培养24h； 7.1.4.2 DNA模板制备：吸取TPGY培养液至无菌离心管中，离心后弃上清，加入PBS悬浮菌体再离心弃上清，用PBS重悬沉淀，并加入溶菌酶溶液摇匀后水浴，加入蛋白酶K溶液摇匀，60℃水浴，再沸水浴，离心后上清液转移至无菌小离心管中，加入NaAc溶液和乙醇，摇匀后进行放置、离心、弃去上清液、沉淀干燥、溶于TE缓冲液，置于、保存备用； 7.1.4.3核酸浓度测定：取DNA模板溶液，加超纯水稀释，用核酸蛋白分析仪或紫外分光光度计分别检测波段的吸光值。按式计算DNA浓度； 7.1.4.4 PCR扩增：引物与反应体系、反应程序、对照设置、凝胶电泳检测PCR扩增产物。 7.1.5毒株产毒动物学试验 7.1.5.1毒素检测与确证动物试验 ①毒素液制备 取样品匀液约40mL或均匀液体样品25mL放入离心管，3000r/min离心10min～20min，收集上清液分为两份放入无菌试管中，一份直接用于毒素检测，一份用于胰酶处理后进行毒素检测。液体样品保留底部沉淀及液体约12mL，重悬，制备沉淀悬浮液备用。 胰酶处理：用1mol/L氢氧化钠或1mol/L盐酸调节上清液pH至6.2，按9份上清液加1份10%胰酶（活力1:250）水溶液，混匀，37℃孵育60min，期间间或轻轻摇动反应液。 ②检出试验 用5号针头注射器分别取离心上清液和胰酶处理上清液腹腔注射小鼠3只，每只0.5 mL，观察和记录小鼠48 h内的中毒表现。典型肉毒毒素中毒症状多在24 h内出现，通常在6 h内发病和死亡，其主要表现为竖毛、四肢瘫软，呼吸困难，呈现风箱式呼吸、腰腹部凹陷、宛如蜂腰，多因呼吸衰竭而死亡，可初步判定为肉毒毒素所致。若小鼠在24h后发病或死亡，应仔细观察小鼠症状，必要时浓缩上清液重复试验，以排除肉毒毒素中毒。若小鼠出现猝死（30min内）导致症状不明显时，应将毒素上清液进行适当稀释，重复试验。 ③确证试验 上清液或（和）胰酶处理上清液的毒素试验阳性者，取相应试验液3份，每份0.5mL，其中第一份加等量多型混合肉毒毒素诊断血清，混匀，37℃孵育30 min；第二份加等量明胶磷酸盐缓冲液，混匀后煮沸10min；第三份加等量明胶磷酸盐缓冲液，混匀。将三份混合液分别腹腔注射小鼠各两只，每只0.5mL，观察96h内小鼠的中毒和死亡情况。 结果判定：若注射第一份和第二份混合液的小鼠未死亡，而第三份混合液小鼠发病死亡，并出现肉毒毒素中毒的特有症状，则判定检测样品中检出肉毒毒素。 7.1.5.2毒力测定试验 取确证试验阳性的试验液，用明胶磷酸盐缓冲液稀释制备一定倍数稀释液，如10倍、50倍、100倍、500倍等，分别腹腔注射小鼠各两只，每只0.5mL，观察和记录小鼠发病与死亡情况至96h，计算最低致死剂量（MLD/mL或MLD/g），评估样品中肉毒毒素毒力，MLD等于小鼠全部死亡的最高稀释倍数乘以样品试验液稀释倍数。例如，样品稀释两倍制备的上清液，再稀释100倍试验液使小鼠全部死亡，而500倍稀释液组存活，则该样品毒力为200MLD/g。 7.1.5.3毒素型别鉴定试验 根据毒力测定结果，用明胶磷酸盐缓冲液将上清液稀释至10MLD/mL～1000MLD/mL作为定型试验液，分别与A、B、E、F等各单型肉毒毒素诊断血清等量混合（国产诊断血清一般为冻干血清，用1 mL生理盐水溶解），37℃孵育30 min，分别腹腔注射小鼠两只，每只0.5 mL，观察和记录小鼠发病与死亡情况至96h。同时，用明胶磷酸盐缓冲液代替诊断血清，与试验液等量混合作为小鼠试验对照。 结果判定：某一单型诊断血清组动物未发病且正常存活，而对照组和其他单型诊断血清组动物发病死亡，则判定样品中所含肉毒毒素为该型肉毒毒素。 7.1.6免疫学鉴定 7.1.6.1胶体金免疫层析试验检验 ①用微量移液器或刻度吸管吸取120μL处理后的样品液； ②样品液加入检验卡的样品孔并观察结果； ③结果判定：当控制线（C）出现紫红色沉淀线，而检验线（T）不出现紫红色沉淀线时为阴性，即无BoNT/A检出，当控制线（C）和检验线（T）均出现紫红色沉淀线时为阳性，表明样品中含有BoNT/A，当控制线（C）和检验线（T）均不出现紫红色沉淀线，或只有检验线（T）出现紫红色沉淀线，表示检验卡失效或实验失败。 7.1.6.2 ELISA双抗体夹心定性试验 ①包被：将抗BoNT/A兔多克隆抗体用包被缓冲液1:2000稀释； ②洗涤：弃去孔内溶液，用洗涤缓冲液清洗3次，拍干； ③封闭：每孔加入200μL封闭液，37℃孵育1h，弃封闭液； ④加样：加一定稀释的待检上清液100μL于上述已包被之反应孔中；同时，以阴性对照和阳性对照试剂（1:104稀释）各100μL，各设置1孔，并设空白对照1孔，置37℃孵育1h。重复步骤2.3.2洗涤； ⑤加酶标抗体：在各反应孔中加入新鲜稀释的HRP标记的抗BoNT/A马血清多抗(1:3000稀释)各100μL。37℃孵育1h，重复步骤2.3.2洗涤； ⑥终止反应：在各反应孔中分别加入2mol/L硫酸50μL。 7.2医源性中毒模块 7.2.1 因在美容机构不规范注射“A型肉毒素”致中毒案例 7.2.2医源性肉毒素中毒的虚拟病人治疗的PBL案例讨论 7.3肉毒素应用模块 7.3.1建立大鼠坐骨神经慢性压迫损伤模型（chronic constriction injury of the sciatic nerve，CCI）。 ①清洁级SD大鼠 ，200～250 g。用1% 戊巴比妥钠 35 mg/kg腹腔注射麻醉 ②俯卧位固定于动物手术台上，电动剃毛器剃去左后肢大腿外侧至股骨区域的毛发。 ③将动物以俯卧位固定四肢于手术板上，酒精棉球对手术区皮肤进行消毒处理，于左侧大腿股骨外缘凹陷中下部切开皮肤1.5 cm，钝性分离肌肉，暴露坐骨神经主干。 ④止血钳顺肌纹钝性分离股二头肌即可暴露出坐骨神经。固定钩稍微撑开肌肉，暴露出手术视野，用镊子轻柔分离出坐骨神经，在坐骨神经三叉分支前的主干部位游离神经7 mm左右。 ⑤在距离三叉分支前2 mm处，用，以4-0号铬制羊肠线结扎坐骨神经4道，每道间距1 mm，使被结扎的神经长约4～5 mm。结扎的松紧程度以打结时可见小腿肌肉或脚趾轻微抽动为准。（6）手术区用生理盐水或PBS冲洗干净，依次缝合肌肉、皮下组织及皮肤，清洗伤口并用酒精消毒。 7.3.2模型痛觉行为学检测 手术后第5天测定机械缩足反射阈值（mechanical?withdrawal?threshold， MWL）：置大鼠于透明的有机玻璃箱 (20 cm × 20 cm × 15cm)中，底为铁丝网，实验前使之适应30min。待大鼠安静后采用测痛计(Von Frey纤毛)，由下往上垂直刺激大鼠损伤后肢足底中心，逐渐加大刺激强度，观测回缩反应（如舔足、甩腿等）时的刺激强度值为MWT，每次刺激间隔10s，测5次取平均值。 7.3.3肉毒毒素A（BoNT/A）对神经病理性痛的治疗作用行为学观察 ①皮下注射肉毒毒素 在手术侧足底皮下注射BoNT/A，麻醉后暴露患肢足底，用微量注射器连接带针PE管吸取BoNT／A注射液 (20U/kg) 0.2 ml/KG，在足跟前3mm处进针 ，当针尖在皮下走行至掌心后注射 BoNT／A，整个过程应避免 损伤血管及穿破皮下导致药物渗漏。检测注射后3天大鼠机械撤足阈值的变化。 ②检测MWL的变化 方法同前，结果：足底皮下注射BoNT/A可显著升高外周神经损伤后下降的机械触痛阈，缓解神经病理性疼痛。 7.3.4肉毒毒素A（BoNT/A）对神经病理性痛的治疗作用免疫组织化学检测 7.3.4.1标本取材与包埋切片 ①3% 戊巴比妥钠腹腔麻醉。 ②开胸经左心室插管，以 4℃ 0.9% 氯化钠溶液 200 mL、4℃4%多聚甲醛 200 mL经左心室快速灌注固定30 min。 ③取 L4～L6脊髓于4%多聚甲醛4℃固定。 ④标本经梯度酒精脱水，75%乙醇4h，85%乙醇2h，90%乙醇2h，95%乙醇2h，无水乙醇I 1h，无水乙醇II 30min，无水乙醇III 30min，二甲苯I 15min，二甲苯II 10min。 ⑤标本浸蜡，石蜡I 1h，石蜡II 1h，石蜡III 1h。 ⑥将浸蜡之后的组织包入组织盒中，待石蜡凝固后，进行修整并切成0.4μm组织切片。 7.3.4.2石蜡切片脱蜡 ①预热：将切片放在玻片铁架上，放于65℃-70℃恒温箱加热1h。 ②脱蜡：在二甲苯1、2、3号缸里脱蜡各10-15min。 ③梯度酒精脱二甲苯：依次放入无水乙醇-95%乙醇-80%乙醇-75%乙醇，每缸各10-15min。 ④自来水水化5min，蒸馏水水化5min×2次。注意流水冲洗，但勿直接冲洗切片。 7.3.4.3抗原修复 ①将盛有0.01 mol/L柠檬酸缓冲液（pH=6.0）的高压锅加热，然后缓慢将切片置入热柠檬酸中，旋紧高压锅盖，从高压稳定喷气后开始计时3min。 ②脱离热源，至跳阀后打开锅盖，降温至室温，取出切片用双蒸水冲洗5min×3遍。 7.3.4.4切片上滴加过氧化物酶阻断剂（3%H2O2），37℃孵育10 min，0.01 mol/L?pH7.4 PBS冲洗5min×3次。 7.3.4.5滴加 30μｌ正常羊血清，室温孵育 15min。 7.3.4.6除去血清，滴加 30μl 1:100 SP兔抗大鼠多克隆抗体。空白对照片加 30μl抗体缓冲稀释液，湿盒内 4℃过夜。0.01 mol/L?pH7.4 PBS漂洗 3min×3次。 7.3.4.7除去PBS，切片上滴加聚合物辅助剂（试剂1），37℃孵育15min，1×PBS冲洗5min×3次。 7.3.4.8除去PBS，切片上滴加辣根过氧化物酶（HRP）标记羊抗兔二抗Ig G聚合物，37℃孵育15 min，0.01 mol/L?pH7.4 PBS冲洗5min×3次。 7.3.4.9切片上滴加新鲜配制的DAB显色试剂，显色6min，在显微镜下观察，及时用dd H2O冲洗终止显色。时间要控制好，切勿显色过深，当觉得颜色合适时用自来水冲洗切片终止显色。 7.3.4.10苏木素复染 1～2min，自来水充分冲洗。 7.3.4.11 用1%盐酸酒精分化2s，自来水冲洗20min反蓝。 7.3.4.12脱水：将切片置于水中冲洗后，将切片依次放入无水乙醇Ⅰ-无水乙醇Ⅱ-二甲苯Ⅰ-二甲苯Ⅱ中脱水透明，每个试剂中放置2min，最后在通风橱中风干切片。 7.3.4.13待切片完全晾干，用中性树胶封片。 7.3.4.14每只动物随机选取 5 张片子，每张切片随机取5个视野，应用病理图像分析系统分别测定每个视野相同面积测量框（6600μm2）内，免疫阳性反应物的累积光密度值进行统计分析。 | ||||||
| 售后服务要求： | 一、售后服务要求 1、中标人应向采购人提供完整的技术资料壹套。各项指标和参数应符合验收标准，采购人有权委托国内有资质单位或机构对货物性能、精度进行校核。 2、中标人应提供货物的出厂检验报告、合格证书、装箱单等。 3、中标人在接到采购人故障通知24小时内派工程师到达现场，若48小时内无法修复的货物，中标人则应提供备品供采购人教学、科研使用。 4、安装、调试：由中标人或原生产厂家现场安装调试。 5、培训：由中标人或原生产厂家进行安装培训和售后培训。 6、保修期：自验收合格日起整机（包括配件）开始计算保修期，质保期自验收合格之日起计1年，需承诺终身维修。质保期内免费提供系统维护、升级等技术支持服务。质保期后应提供系统维护、扩充、升级等方面的技术支持服务。 7、保修点：国内保修点可提供部件更换，原厂专业维修。 8、系统故障报修的响应时间：提供全天候无间断的远程技术服务，4小时内对问题做出响应。若电话中无法解决，3个工作日内到达现场进行解决。 9、免费为教师提供培训及咨询服务。免费提供所购软件中文版的操作说明书及相关技术资料。 10、中标人需提供包装完好、全新的货物，所供货物的出厂日期和供货日期之差不得大于6个月。 11、证件要求：若为特种仪器设备需由中标商办理相关部门准予使用的证件，验收时须提供完整证件。办理证件所需费用计入投标总价中，采购方仅提供必要的协助。 12、供方承诺的服务中如涉及第三方提供的，由供方负责协调。 二、签订合同时间：中标人在接到成交通知书后15日内与采购单位签订采购合同。 三、供货时间：国产及进口非免税产品为合同生效后30日内，进口免税产品完成办理免税证明后60日内。 四、交货详细地点：采购人指定地点。 五、报价方式、付款方式及其他要求 1、报价方式 （1）若投标人所投产品为进口免税产品，投标人应报人民币免税价（CIP，福建医科大学指定地点价。报价中含外贸代理服务费及海关进关等相关费用）。 （2）若投标人所投产品为进口非免税产品，投标人应报人民币含税价（福建医科大学校内指定地点价）。交货时应提供相关的海关证明资料。 （3）若投标人所投的产品为国产产品，则报产品到达福建医科大学指定地点的人民币价。 （4）投标报价含产品、备件、专用工具、安装、调试、检验、技术培训及技术资料和运输保险等费用，采购人将不再另行支付费用。 （5）若投标人所投产品为成套产品，应在投标文件《投标分项报价表》中明确列出配套各产品的分项报价（进口产品须注明含税价或免税价）及来源地。 2、投标报价需包含货物在采购人单位内的安装、搬运及货物就位的一切费用。 3、付款方式 （1）国产及进口非免税产品付款方式：货到安装验收合格后30日内付清合同总金额。 （2）进口免税产品付款方式：采购合同签订后，学校预支付100%货款给第三方外贸公司，由第三方外贸公司对外付款（货物到达口岸后付80%的合同款，余款20%待全部货物验收合格正常运行三个月后付清）,验收合格后第三方外贸公司提供合法结算单据（外商发票、银行购汇水单、手续费发票等）。 4、采购货物如为医疗器械的应符合医疗器械相关管理规定并具备医疗器械注册证。 5、若中标产品为进口免税产品，采购人、中标人将共同委托具有相应资质的第三方外贸公司办理货物进口减免税等进口相关手续。 6、验收要求：中标人需提供包装完好、全新的货物，所供货物的出厂日期和供货日期之差不得大于6个月。所有货物按厂家产品验收标准(符合国家或行业或地方标准)、招标文件、投标文件等有关部分内容及样品（若有）进行验收，有可能做破坏性实验检查材料是否符合招标文件要求。验收方法：货物安装调试完毕后，进行为期30天的试运行。试运行结束后，采购人对货物性能及技术指标进行评价，符合要求后的，验收通过；不合格的，中标人需进行更换或整改，并重新调试运行直至达到验收合格。验收时中标人应提供招标文件、投标文件及合同等相关材料，如发现货物与之规定不符，采购人有权拒绝接受并向中标人提出索赔。如货物在质量保证期内被证明存在缺陷，包括潜在的缺陷或使用不合适的材料，采购人有权凭有关证明文件向中标人提出索赔。 六、违约责任 1、如果中标人未能按合同规定的时间按时足额交货的（不可抗力除外），在中标人书面同意支付延期交货违约金的条件下，采购人有权选择同意延长交货期还是不予延长交货期，采购人同意延长交货期的，延期交货的时间由双方另行确定。延期交货违约金的支付采购人有权从未付的合同货款中扣除。延期交货违约金比率为每迟交1 天，按迟交货物金额的2%。但是，延期交货违约金的支付总额不得超过迟交货物部分合同金额的30 %。 2、如果中标人未能按合同规定的时间或双方另行确定的延期交货期按时足额交货的（不可抗力除外），每逾期1天，中标人应按迟交货物金额的2%向采购人支付逾期交货的违约金。逾期交货违约金的支付采购人有权从未付的合同货款中予以扣除。若中标人逾期交货达30天以上（含30天）以上的，采购人有权单方解除本合同，中标人仍应按上述约定支付延期交货违约金。若因此给采购人造成损失的，还应赔偿采购人所受的损失。 3、若中标人不能交货的（逾期15个工作日视为不能交货，不可抗拒的因素除外）或交货不合格从而影响采购人正常使用的，中标人应向采购人偿付不能交货部分货款的20%的违约金。违约金不足以补偿损失的，采购人有权要求中标人赔偿损失。 4、如果中标人未能按照合同约定的时间提供服务的，每逾期1天的，中标人应向采购人支付500元违约金，若因此给采购人造成损失的，中标人还应赔偿采购人所受的损失。 七、本标书中未明之处，可进行必要的咨询和补充说明。 八、以上条款由采购人全权解释。 | ||||||
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